鎳-瓊脂糖凝膠FF（Ni-Berpharose FF）
1. 產品介紹
鎳-瓊脂糖凝膠FF以瓊脂糖微球為基質，活化偶聯亞氨基二乙酸（IDA），之后螯合Ni2+。IDA是金屬螯合層析中常用的配體，和次氮基三乙酸（NTA）相比，IDA具有親和力強、載量高、可再生重復使用等優點。
鎳-瓊脂糖凝膠FF主要用于純化含有組胺酸標簽（His-Tag）的重組蛋白。組胺酸標簽中的咪唑環同過渡金屬Ni2+形成穩定的配位鍵，能特異、牢固和可逆地吸附在固定有Ni2+的基質上，可通過增加咪唑濃度對重組蛋白進行競爭洗脫。
2.規格
1ml（預裝柱）、5ml（預裝柱）、10ml（預裝柱）、20ml、100ml、500ml
4.純化流程
①平衡
鎳-瓊脂糖凝膠FF柱用2~5個柱體積的初始緩沖溶液進行平衡。
建議流速為100 cm/h。
②上樣
（1）樣品一般溶解于pH6~8的初始緩沖液中。提高上樣緩沖液的pH值可以增大載量。
（2）緩沖液中不能含有EDTA和檸檬酸鹽，同時避免巰基乙醇、DTT等還原劑。
（3）常用緩沖液有10~100 mM鈉緩沖液、20~200 mM Tris-HCl緩沖液等。
（4）緩沖液中一般要加入0.15~0.5 M的NaCl以消除離子交換作用。
（5）初次使用鎳-瓊脂糖凝膠FF時，推薦使用50 mM PBS（50 mM NaH2PO4，0.5 M NaCl,pH 7.4）作為初始緩沖液。
③洗脫
（1）增加咪唑濃度進行洗脫是鎳-瓊脂糖凝膠FF常用的洗脫方法。
（2）咪唑為堿性，相應緩沖液配制后需要用HCl調節pH值。
（3）初次使用鎳-瓊脂糖凝膠FF時，如不確定洗脫需要的咪唑濃度，推薦在初始緩沖液中分別加入10 mM、20 mM、50 mM、100 mM、200 mM、500 mM咪唑，濃度從低
到高分別洗脫和收集重組蛋白，之后通過SDS-PAGE電泳等方法鑒定洗脫結果。
（4）有條件的可以進行咪唑梯度線性洗脫以確定較佳的洗脫條件。
洗脫方法
（1）降低pH洗脫：大多數蛋白在pH6~4會被洗脫下來（也可以在pH 3~4），緩沖液可以是醋酸鈉、檸檬酸和鹽緩沖體系。
（2）競爭性洗脫：線性增加或一步增加同金屬離子有親和力的競爭物質的濃度（如0~0.5M咪唑、0~50 mM組胺酸、0~2M NH4Cl）。梯度洗脫在起始緩沖液的恒定pH值下進行。
（3）螯合劑洗脫：EDTA、EGTA等螯合劑可同金屬離子產生作用力，導致蛋白被洗脫下來。此法不能分離不同的蛋白，還會影響蛋白的吸附，導致融合蛋白無法掛柱。
注：降低pH洗脫和螯合劑洗脫會使得金屬離子脫落，下次使用前需要重新螯和金屬離子。常用的方法為競爭性洗脫。
上述洗脫方法，均須在緩沖液中加入150 ~500mM的NaCl以消除離子交換作用。
5.再生、清洗、保存
①凝膠再生
（1）多次使用后或需要更換螯合的金屬離子時，必須將凝膠脫鎳再生。脫鎳方法：用5~10個柱體積的蒸餾水淋洗柱子，再用5~10個柱體積的100 mM EDTA淋洗柱子，用2~3個柱體積的0.5 M NaCl洗掉殘留的EDTA。
（2）多次使用的柱子脫鎳后一般需要進行清洗。清洗方法：用0.1~1.0 M NaOH反向清洗柱子，50 cm/h保持1~2 h，能去除結合強的雜質，同時也能去除熱源。
（3）清洗后需要重新螯合金屬離子。螯合方法：用2~5個柱體積的蒸餾水充分平衡脫鎳后的柱子，用0.1~0.3 M金屬鹽溶液過柱5~10個柱體積以螯合金屬離子，之后用5~10個柱體積的蒸餾水淋洗以去除未螯合的金屬離子。
②在位清洗
（1）去除因離子交換作用吸附的蛋白：2~3個柱體積的2 M NaCl溶液反向清洗。
（2）去除強疏水性蛋白和脂質等：4個柱體積的70%乙醇或者30%異丙醇反向清洗。
（3）除去蛋白沉淀、疏水性蛋白：參照凝膠再生步驟。
6.注意事項：
1)使用時保證柱子和緩沖液的溫度一致，避免柱床內產生氣泡，影響純化效果。
2)本產品保存條件為20%乙醇，4~8℃。
3) 2-25℃,常壓,避光運輸
上一篇 : 信帆生物-溶菌酶檢測試劑盒優點太多啦
下一篇 : 重組人血清白蛋白（r-HSA）
在線咨詢